Лаборатория биоорганической химии ферментов [Институт химической биологии и фундаментальной медицины]
ИХБФМ СО РАН » ru » Структура института » Лаборатории » Лаборатория биоорганической химии ферментов
Лаборатория биоорганической химии ферментов

Лаборатория биоорганической химии ферментов

Заведующая лабораторией



Лаврик Ольга Ивановна
Академик РАН, профессор, г.н.с.,
Лауреат Государственной премии СССР, лауреат премий Сибирского Отделения РАН, стипендиат государственной стипендии для выдающихся ученых России, иностранный профессор Парижского Университета 6 (имени Пьера и Марии Кюри), кавалер Ордена Академических Пальм.
телефон: (383) 363-51-95,


Сотрудники

ФИО Должность Звание Телефон E-mail Researcher ID
Алемасова Елизавета Эдуардовна м.н.с к.б.н. 363-51-96
Анарбаев Рашид Октамович н.с. к.х.н. 363-51-96 G-8485-2013
Белоусова Екатерина Анатольевна н.с. к.х.н. 363-51-96 G-4718-2013
Васильева Инна Анатольевна н.с. к.х.н. 363-51-96
Дырхеева Надежда Сергеевна н.с.к.х.н. 363-51-96 G-2668-2013
Евдокимов Алексей Николаевич н.с. к.б.н. 363-51-94 G-4325-2013
Захаренко Александра Леонидовна н.с. к.х.н. 363-51-96 E-4534-2014
Ильина Екатерина Сергеевна н.с. к.х.н. 363-51-96 G-4224-2013
Кочеткова Алина Сергеевна лаборант 363-51-96
Красикова Юлия Сергеевна н.с. к.х.н. 363-51-96 G-4748-2013
Кургина Татьяна Андреевна лаборант 363-51-96
Кутузов Михаил Михайлович н.с. к.х.н. 363-51-96 G-4239-2013
Лаврик Ольга Ивановна зав. лабораторией чл.-корр. 363-51-95 G-4641-2013
Лебедева Наталья Александровна с.н.с. к.х.н. 363-51-96 G-4758-2013
Лукьянчикова Наталья Вильевна ст.лаборант 363-51-96
Мальцева Екатерина Анатольевна н.с. к.х.н. 363-51-96 G-6953-2013
Мамонтова Евгения Михайловна ст.лаборант 363-51-96
Медведева Лидия Ильинична ст. лаборант 363-51-94
Моор Нина Александровна в.н.с. д.х.н., доцент 363-51-96 G-7097-2013
Науменко Константин Николаевич инженер 363-51-96
Петрусева Ирина Олеговна с.н.с. к.х.н. 363-51-94
Попов Алексей Алексеевич ст.лаборант 363-51-94
Речкунова Надежда Ивановна с.н.с. к.х.н. 363-51-96 G-5093-2013
Сингатулина Анастасия Шавкатовна м.н.с 363-51-96
Старостенко (Скосарева) Лидия Васильевна инженер 363-51-96 G-4672-2013
Суханова Мария Владиславовна с.н.с. к.б.н. 363-51-96 G-5539-2013
Ходырева Светлана Николаевна в.н.с. д.б.н. 363-51-96 G-4659-2013
Чепанова Арина Александровна ст.лаборант 363-51-96

Основные направления исследований


  • Исследование процесса эксцизионной репарации оснований ДНК у высших эукариот. Изучение взаимодействий ДНК-полимераз бета, лямбда, апуриновой/апиримидиновой эндонуклеазы (APE1), флэп-эндонуклеазы-1 (FEN1), PCNA, XRCC1, поли(ADP-pибозо)полимеразы-1 (PARP1) человека с ДНК-структурами, имитирующими интермедиаты эксцизионной репарации оснований. Идентификация новых участников репарации оснований в клеточных экстрактах с помощью метода аффинной модификации в сочетании с MALDI-MS и установление их функций.
  • Исследование процесса узнавания повреждений и механизма эксцизионной репарации нуклеотидов.
  • Изучение механизмов репарации множественных повреждений в ДНК.
  • Исследование синтеза ДНК через повреждение, катализируемого ДНК-полимеразами бета, лямбда, йота.
  • Кристаллографический анализ белков репарации ДНК и их комплексов.
  • Поиск новых эффективных ингибиторов ключевых ферментов систем репарации /репликации и их регуляторов на основе природных и синтетических соединений как потенциальных лекарств для терапии рака и других болезней человека.
  • В лаборатории выделяются практически все известные белки репликации и эксцизионной репарации ДНК, а также ключевые ферменты молекулярно-биологических исследований (обратная транскриптаза вируса лейкемии мышей, полинуклеотидкиназа фага Т4, ДНК-лигаза фага Т4, Taq ДНК-полимераза, Taq ДНК-секвеназа, фрагмент Штоффеля Taq ДНК-полимеразы, РНК-полимераза фага Т7, урацил-ДНК-гликозилаза E. coli) для научно-исследовательских работ Института.

Важнейшие научные результаты


  • Развит оригинальный подход для исследования ансамблей белков репликации и репарации ДНК in vitro, в том числе в клеточных экстрактах, основанный на использовании реакционноспособных интермедиатов этих процессов, синтезированных с помощью ДНК-полимераз и различных фотореакционноспособных аналогов dNTP. [Khodyreva S.N. & Lavrik O.I., Curr. Med. Chem. 2005. 12, 641; Lavrik O.I. et al., J. Biol. Chem. 2001. 276, 25541].
  • Открыта ключевая роль PARP1 в координации путей репарации оснований. [Sukhanova M.V. et. al., Nucleic Acids Res. 2005. 33, 1222; Sukhanova M.V. et al., Mutat. Res. 2010. 80, 685].
  • Выявлено специфическое взаимодействие ряда белков (HMGB1, Ku70/80, XRCC1) с наиболее распространенными повреждениями в ДНК – апуриновыми/ апиримидиновыми сайтами – для их временной защиты и последующей репарации. [Prasad R. et al., Mol. Cell. 2007. 27, 829; Nazarkina Z.K. et al., DNA repair. 2007. 6, 254; Ilina E.S. et al., Biochim. Biophys. Acta. 2008. 1784(11), 1777].
  • Идентифицированы новые участники процессинга АР-сайтов, PARP1 и тирозил-ДНК-фосфодиэстераза 1. [Khodyreva S.N. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2010. 107, 22090; Lebedeva N.A. et al., FEBS Lett. 2011. 585, 683].
  • Впервые обнаружена полярность в связывании с однонитчатой ДНК ключевого фактора эукариотической репликации и репарации – репликативного белка А. Установлена роль малых субъединиц RPA (p32, p14) в формировании его функциональных комплексов с ДНК в процессах репарации и репликации. [Lavrik O.I. et al., Nucleic Acids Res. 1999. 27, 4235; Kolpashchikov D.M. et al., Nucleic Acids Res. 2001. 29, 373].
  • Установлено расположение ХРА, RPA и XPC на поврежденной ДНК в процессе эксцизионной репарации нуклеотидов. [Krasikova Y.S. et al., Nucleic Acids Res. 2010. 38, 8083; Krasikova Y.S. et al., J. Biol. Chem. 2013. 288, 10936].
  • Установлены структурные основы функционирования фенилаланил-тРНК-синтетаз из бактерий, митохондрий и цитоплазмы человека с помощью рентгеноструктурного анализа ферментов и их комплексов с различными субстратами. [Safro M. et al., In book: The aminoacyl-tRNA synthetases. 2005. Georgetown, USA, 251; Moor N.A. et al., Biochemistry. 2006. 45, 10572; Klipcan L. et al., Structure. 2008. 16, 1095; Finarov I. et al., Structure. 2010. 18, 343]. Открыт уникальный механизм продуктивного взаимодействия синтетаз с тРНК, координируемого низкомолекулярными субстратами. [Moor N.A. et al., Biochemistry. 2003. 42, 10697; Klipcan L. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2009. 106, 11045; Moor N.A. et al., Chemistry&Biology. 2011. 18, 1221; Klipcan L. et al., J. Mol. Biol. 2012. 415, 527].

Сотрудничество лаборатории развивается с ведущими научными центрами Франции, США, Нидерландов, Израиля, Ирландии, Италии, Германии и Японии.
Лаборатория имеет обширные международные контакты.


Текущие гранты


Базовые проекты
Программа фундаментальных научных исследований государственных академий наук (2017 - 2020 гг.)

  • Тема № 57.1.3.Механизмы репарации множественных повреждений ДНК и их регуляция. (0309-2014-0003).
  • Тема № 57.1.2. ПФНИ ГАН Механизмы функционирования систем репарации, транскрипции и трансляции. Патологические процессы, связанные с этими системами. (0309-2016-0001)

Гранты Российского научного фонда

  • № 20-14-00086 «Роль внутренне неупорядоченных белков в образовании безмембранных компартментов в клетке» (2020-2022 гг.)
  • № 17-74-20075 «Поли(ADP-рибоза) полимеразы – ключевые регуляторы репарации ДНК и потенциальные терапевтические мишени».(2017-2020 гг.)
  • № 19-74-10056_мол_гр «Белки репарации голого землекопа и их устойчивость к повреждающим воздействиям» (2019-2022 гг.)
  • № 19-14-00204 «Модифицированные ДНК как ингибиторы систем репарации ДНК: определение клеточных мишеней и оптимальных структур для сенсибилизации опухолевых клеток» (2019-2021 гг.)

Гранты Российского фонда фундаментальных исследований.

  • № 18-04-00882-а «Роль поли(ADP-рибозил)ирования и поли(ADP-рибозы) в регуляции функциональной активности мРНК-связывающих белков». (2018-2020 гг.)
  • № 18-04-00596-а «Механизм преодоления объемных повреждений ДНК-полимеразами в процессе эксцизионной репарации оснований». (2018-2020 гг.)
  • № 17-00-00097 комфи «Механизмы регуляции процессинга множественных повреждений в нуклеосомах и свободной ДНК». (2018-2020 гг.)
  • № 18-44-540023 р_а «Ингибиторы фермента репарации ДНК тирозил-ДНК-фосфодиэстеразы 1 как сенсибилизаторы опухолей к действию химиотерапии» (2018-2020 гг.)
  • № 19-04-00018 «Исследование механизма верификации повреждений ДНК в процессе эксцизионной репарации нуклеотидов» (2019-2021 гг.)
  • № 19-04-00481 » Поиск моллекулярных партнеров белков семейства RARP в процессах репарации ДНК» (2019-2021гг.)
  • № 20-04-00674 А «Исследование (АДФ-рибозил)ирования ДНК в составе динуклеосомы» (2020-2022гг.)
  • № 19-415-540002 р_а «Исследование механизма сенсибилизации опухолевых клеток ингибиторами тирозил-ДНК-фосфодиэстеразы 1 человека к действию известных противораковых препаратов» (2019-2021г)
  • № 19-44-543001 р_мол_а «Ингибиторы ферментов репарации ДНК на основе производных хроменов как потенциальные противораковые препараты» (2019-2021гг.)
  • № 20-34-70028 Стабильность «Регуляция эксцизионной репарации оснований ДНК в контексте динуклеосом как простейшей модели компактизации ДНК» (2019-2021гг.)


Отчеты по проектам МинОбрНауки России



Публикации 2018 - 2020 года


  1. Functional Role of N-Terminal Extension of Human AP Endonuclease 1 in Coordination of Base Excision DNA Repair via Protein–Protein Interactions. Moor N.A., Vasil'eva I.A., Lavrik O.I. Int. J. Mol. Sci. 2020 V. 21 N 9 E3122
  2. Changes in the Ultrastructure of Candida albicans Treated with Cationic Peptides. Grigoryeva A.E., Bardasheva A., Tupitsyna A., Amirkhanov N.V., Tikunova N.V., Pyshnyi D.V., Kleshev M., Moor N.A., Ryabchikova E.I. Microorganisms 2020 V. 8 N 4 E582
  3. Photoreactive DNA as a Tool to Study Replication Protein A Functioning in DNA Replication and Repair. Rechkunova N.I., Lavrik O.I. Photochemistry and Photobiology 2020 V. 96 N 2 P. 440-449
  4. Распределение мультипотентных мезенхимных стромальных клеток и их детрита по организму после подкожного введения. Майбородин И.В., Маслов Р.В., Михеева Т.В., Хоменюк С.В., Майбородина В.И., Морозов В.В., Рягузов М.Е., Моор Н.А., Марчуков С.В., Козлова Ю.Н. Журнал общей биологии 2020 Т. 81 № 2 С. 96-107
  5. Влияние окисления белка XRCC1 человека на функциональную активность его комплексов с ключевыми ферментами эксцизионной репарации оснований ДНК. Васильева И.А., Моор Н.А., Лаврик О.И. Биохимия 2020 Т. 85 № 3 С. 335 – 347
  6. Effect of Human XRCC1 Protein Oxidation on the Functional Activity of Its Complexes with the Key Enzymes of DNA Base Excision Repair. Vasil'eva I.A., Moor N.A., Lavrik O.I. Biochemistry (Moscow) 2020 V. 85 N 3 P. 288 – 299
  7. Inhibition of Transcription Induces Phosphorylation of YB-1 at Ser102 and Its Accumulation in the Nucleus. Kretov D.A., Mordovkina D.A., Eliseeva I.A., Lyabin D.N., Polyakov D.N., Joshi V., Desforges B., Hamon L., Lavrik O.I., Pastre D., Curmi P.A., Ovchinnikova L.P. Cells 2020 V. 9 N 1 E104
  8. Design, Synthesis and Molecular Modeling Study of Conjugates of ADP and Morpholino Nucleosides as A Novel Class of Inhibitors of PARP-1, PARP-2 and PARP-3 Sherstyuk Y.V., Ivanisenko N.V., Zakharenko A.L., Sukhanova M.V., Peshkov R.Y., Eltsov I.V., Kutuzov M.M., Kurgina T.A., Belousova E.A., Ivanisenko V.A., Lavrik O.I., Silnikov V.N., Abramova T.V. Int. J. Mol. Sci. 2020 V. 21 N 1 pii: E214
  9. Identification of novel inhibitors for the tyrosyl-DNA-phosphodiesterase 1 (Tdp1) mutant SCAN1 using virtual screening. Mamontova E.M., Zakharеnko A.L., Zakharova O., Dyrkheeva N.S., Volcho К.P., Reynisson J., Arabshahi H.J., Salakhutdinov N.F., Lavrik O.I. Bioorg. Med. Chem. 2020 V. 28 N 1 P. 115234
  10. Post-translational Modifications of Nucleotide Excision Repair Proteins and Their Role in the DNA Repair. Rechkunova N.I., Maltseva E.A., Lavrik O.I. Вiochemistry (Moscow) 2019 V. 84 N 9 P. 1008-1020
  11. Human apurinic/apyrimidinic endonuclease 1 is modified in vitro by poly(ADP-ribose) polymerase 1 under control of the structure of damaged DNA. Moor N.A., Vasil'eva I.A., Kuznetsov N.A., Lavrik O.I. Biochimie 2020 V. 168 P. 144-155
  12. Novel Inhibitors of DNA Repair Enzyme TDP1 Combining Monoterpenoid and Adamantane Fragments. Mozhaitsev E.S., Zakharenko A.L., Suslov E.V., Korchagina D.V., Zakharova O., Vasil'eva I.A., Chepanova A.A., Black E., Patel J., Chand R., Reynisson J., Leung I.K.H., Volcho К.P., Salakhutdinov N.F., Lavrik O.I. Anticancer Agents Med Chem. 2019 V. 19 N 4 P. 463-472
  13. Inhibitory Effect of New Semisynthetic Usnic Acid Derivatives on Human Tyrosyl-DNA Phosphodiesterase 1. Dyrkheeva N.S., Luzina O., Filimonov A., Zakharova O., Ilina E.S., Zakharenko A.L., Kupryushkin M.S., Nilov D., Gushchina I., Švedas V.K., Salakhutdinov N.F., Lavrik O.I. Planta Med. 2019 V. 85 N 2 P. 103-111.
  14. The Development of Tyrosyl-DNA Phosphodiesterase 1 Inhibitors. Combination of Monoterpene and Adamantine Moieties via Amide or Thioamide Bridges. Chepanova A.A., Mozhaitsev E.S., Munkuev A.A., Suslov E.V., Korchagina K.V., Zakharova O., Zakharenko A.L., Patel J., Ayine-Tora D.M., Reynisson J., Leung I.K.H., Volcho К.P., Salakhutdinov N.F., Lavrik O.I. Exp Mol Pathol. 2019 V. 9 N 13 P. 2767
  15. The Development of Tyrosyl-DNA Phosphodyesterase 1 (TDP1) Inhibitors Based on the Amines Combining Aromatic/Heteroaromatic and Monoterpenoid Moieties. Mozhaitsev E.S., Suslov E.V., Demidova Y., Korchagina D.V., Volcho K, Zakharenko A.L., Vasil'eva I.A., Kupryushkin M.S., Chepanova A., Moscoh Ayine-Tora D., Reynisson J., Salakhutdinov N.F., Lavrik O.I. Letters in Drug Design and Discovery 2019 V. 16 P. 597-605
  16. Роль окисления белка XRCC1 в регуляции процесса репарации ДНК у млекопитающих. Васильева И.А., Моор Н.А., Лаврик О.И. Доклады Академии Наук (биохимия, биофизика, молекулярная биология) 2019 принята к печати.
  17. The Oligomeric State of Base Excision DNA Repair Proteins and Their Complexes Explored by Dynamic Light Scattering. Vasil'eva I.A., Moor N.A., Anarbayev R.O., Lavrik O.I. Int. J. of Biomedicine. 2019 S. 1 P21
  18. Poly(ADP-ribosyl)ation and DNA repair synthesis in the extracts of naked mole rat, mouse, and human cells. Kosova A.A., Kutuzov M.M., Evdokimov A.N., Ilina E.S., Belousova E.A., Romanenko S.A., Trifonov V., Khodyreva S.N., Lavrik O.I. Aging-US 2019 V. 11 N 9 P. 2852-2873
  19. Unrepairable analogous of nucleotide excision repair substrates as a potential anti-cancer drugs. Evdokimov A.N., Dolgova E.V., Popov A.V., Petruseva I.O., Bogachev S.S., Lavrik O.I. Biopolymers & Cell 2019 V. 35 N 2 P. 107–117.
  20. Double-Stranded DNA Fragments Bearing Unrepairable Lesions and Their Internalization into Mouse Krebs-2 Carcinoma Cells. Dolgova E.V., Evdokimov A.N., Proskurina A.S., Efremov Y.R., Bayborodin S.I., Potter E.A., Popov A.A., Petruseva I.O., Lavrik O.I., Bogachev S.S. Nucleic Acid Ther. 2019 принята к печати
  21. DNA complexes with human purinic/apyrimidinic endonuclease 1: structural insights revealed by pulsed dipolar EPR with orthogonal spin labeling. Krumkacheva O.A., Shevelev G.Y., Lomzov A.A., Dyrkheeva N.S., Kuzhelev A.A., Koval V.V., Tormyshev V.M., Polienko Y.F., Fedin M.V., Pyshnyi D.V., Lavrik O.I., Bagryanskaya E.G. Nucleic Acids Res. 2019 pii: gkz620
  22. PARP-1 activation directs FUS to DNA damage sites to form PARG-reversible compartments enriched in damaged DNA. Singatulina A., Hamon L, Bouhss A., Desforges B., Sukhanova M.V., Lavrik O.I., Pastre D. Cell Reports 2019 V. 27 N 6 P.1809-1821
  23. Dynamic light scattering study of base excision DNA repair proteins and their complexes. Vasil'eva I.A., Anarbayev R.O., Moor N.A., Lavrik O.I. Biochim. Biophys. Acta - Proteins and Proteomics. 2019 V. 1867 N 3 P. 297-305
  24. Novel Tyrosyl-DNA Phosphodiesterase 1 Inhibitors Enhance the Therapeutic Impact of Topoteсan on In Vivo Tumor Models. Захаренко А.Л., Luzina O.A., Sokolov D.N., Kaledin V.I., Nikolin V.P., Popova N.A., Patel J., Чепанова А.А.', Zafar A., Reynisson J., Leung E., Leung I.K.H., Volcho K.P., Salakhutdinov N.F., Лаврик О.И. Eur. J. Med. Chem.2019 V. 161 P. 581-593
  25. Inhibitory Effect of New Semisynthetic Usnic Acid Derivatives on Human Tyrosyl-DNA Phosphodiesterase 1. Dyrkheeva N.S., Luzina O., Filimonov A., Zakharova O.D., Ilina E.S., Zakharenko A.L., Kupryushkin M.S., Nilov D., Gushchina I., Švedas V.K., Salakhutdinov N.F., Lavrik O.I. Planta Med. 2019 V. 85 N 2 P. 103-111
  26. Naked mole rat cells display more efficient excision repair than mouse cells. Evdokimov A.N., Kutuzov M.M., Petruseva I.O., Lukjanchikova N., Kashina E., Kolova E., Zemerova T.P., Romanenko S.A., Perelman P., Prokopov D., Seluanov A., Gorbunova V., Graphodatsky A.S., Trifonov V.A., Khodyreva S.N., Lavrik O.I. Aging-US 2018 V. 10 N 6. P. 1454-1473.
  27. Comprehensive analysis of telomerase inhibition by gallotannin. Savelyev N., Baykuzina P., Dokudovskaya S., Lavrik O.I., Rubtsova M., Dontsova O.A. Oncotarget 2018 V. 9 N 27 P. 18712-18719.
  28. The multifunctional protein YB-1 potentiates PARP1 activity and decreases the efficiency of PARP1 inhibitors. Alemasova E.E., Naumenko K.N., Kurgina T.A., Anarbayev R.O., Lavrik O.I. Oncotarget 2018 V. 9 N 34 P. 23349-23365.
  29. Unusual interaction of human apurinic/apyrimidinic endonuclease 1 (APE1) with abasic sites via the Schiff-base-dependent mechanism. Ilina E.S., Khodyreva S.N., Lavrik O.I. Biochimie 2018 V. 150 P. 88-99.
  30. A rapid fluorescent method for the real-time measurement of poly(ADP-ribose) polymerase 1 activity. Kurgina T.A., Anarbayev R.O., Sukhanova M.V., Lavrik O.I. Anal Biochem. 2018 V. 545 P. 91-97.
  31. Aminoadamantanes containing monoterpene-derived fragments as potent tyrosyl-DNA phosphodiesterase 1 inhibitors. Ponomarev K.Yu., Suslov E.V., Zakharenko. A.L., Zakharova O.D., Rogachev A.D., Korchagina D.V., Zafar A., Reynisson J., Nefedov A.A., Volcho К.P., Salakhutdinov N.F., Lavrik O.I. Bioorg. Chem. 2018 V. 76 P. 392–399.
  32. RPA and XPA interaction with DNA structures mimicking intermediates of the late stages in nucleotide excision repair. Krasikova Y.S., Rechkunova N.I., Maltseva E.A., Lavrik O.I. PloS ONE. 2018 V. 13 N 1.
  33. Structural Basis for the Recognition and Processing of DNA Containing Bulky Lesions by the Mammalian Nucleotide Excision Repair System. Evdokimov A.N., Tsidulko А.Yu., Popov A.V., Vorobjev Y.N., Lomzov A.A., Koroleva L.S., Silnikov V.N., Petruseva I.O., Lavrik O.I. DNA Repair. 2018 V. 61 P. 86-98.
  34. ДНК с объемными повреждениями в обеих цепях молекулы как субстраты системы эксцизионной репарации нуклеотидов Лукьянчикова Н.В., Петрусева И.О., Евдокимов А.Н., Королева Л.С., Лаврик О.И.Молекулярная биология 2018 Т. 52 № 2. C. 277-288.
  35. Characterisation of DNA ADP-ribosyltransferase activities of PARP2 and PARP3: new insights into DNA ADP-ribosylation Zarkovic G., Belousova E.A., Talhaoui I., Saint-Pierre C., Kutuzov M.M., Matkarimov B.T., Biard D., Gasparutto D., Lavrik O.I., Ishchenko A.A. Nucleic Acids Res. 2017 V. 46 N 5 P. 2417-2431 - Dna is a New Target of Parp3. Belousova E.A., Ishchenko A.A., Lavrik O.I. Scientific Reports 2018 V. 8 N 1 P. 1-12 10.1038/s41598-018-22673-3.
  36. Novel Semisynthetic Derivatives of Bile Acids as Effective Tyrosyl-DNA Phosphodiesterase 1 Inhibitors. Salomatina O.V., Popadyuk I.I., Zakharenko A.L., Zakharova O.D., Fadeev D.S., Komarova N.I., Reynisson J., Arabshahi H.J., Chand R., Volcho К.P., Salakhutdinov N.F., Lavrik O.I. Molecules 2018 V. 23 N 3 P. 1-19 3390/molecules23030679. принята к печати.
  37. 2,5-дикетопиперазины: новый класс ингибиторов Поли(АБР-рибозо)полимеразы Нилов Д.К., Яшина К.И., Гущина И.В., Захаренко А.Л., Суханова М.В., Лаврик О.И., Швядас В.К. Биохимия 2018 Т. 83 № 2 С. 251-258.
  38. Белок-белковые взаимодействия системы эксцизионной репарации оснований ДНК. Моор Н.А., Лаврик О.И. Биохимия 2018 Т. 83 № 4 С. 564-576.


Патенты


  1. СРЕДСТВА ДЛЯ ИНГИБИРОВАНИЯ ФЕРМЕНТА ТИРОЗИЛ-ДНК-ФОСФОДИЭСТЕРАЗЫ 1 НА ОСНОВЕ ЖЕЛЧНЫХ КИСЛОТ. Саломатина О.В., Захаренко А.Л., Попадюк Ирина Леонидовна, Дырхеева Н.С., Йоханнес Рейниссон, Волчо К.П.*, Лаврик О.И., Салахутдинов Н.Ф.* 2018 г. № 2689335
  2. СРЕДСТВО ДЛЯ ИНГИБИРОВАНИЯ ФЕРМЕНТА ТИРОЗИЛ-ДНК-ФОСФОДИЭСТЕРАЗЫ 1 ЧЕЛОВЕКА. Захаренко А.Л., Лебедева Н.А., Лузина О.А., Салахутдинов Н.Ф., Лаврик О.И. 2016 г. № 2605329.
  3. НАНОКОМПОЗИТЫ ДИОКСИДА ТИТАНА ДЛЯ ИНАКТИВАЦИИ ВИРУСНОГО ГЕНОМА ВНУТРИ КЛЕТОК, СПОСОБ ИХ ПОЛУЧЕНИЯ. Исмагилов З.Р., Шикина Н.В., Пармон В.Н., Зарытова В.Ф., Левина А.С., Репкова М.Н., Беланов Е.Ф., Зиновьев В.В., Малыгин Э.Г., Загребельный С.Н., Байбородин С.И., Нетесов С.В., Евдокимов А.Н. 2012 г. № 2444571.
  4. СРЕДСТВО ДЛЯ ИНГИБИРОВАНИЯ ФЕРМЕНТА ПОЛИ(АДФ-РИБОЗО)ПОЛИМЕРАЗЫ-1 ЧЕЛОВЕКА. Ходырева С.Н., Лаврик О.И., Захаренко А.Л., Михайлов С.Н., Куликова И.В., Ефимцева Е.В. 2011 г.№ 2411948.
  5. СРЕДСТВО ДЛЯ ИНГИБИРОВАНИЯ ФЕРМЕНТА ТИРОЗИЛ-ДНК-ФОСФОДИЭСТЕРАЗЫ 1 ЧЕЛОВЕКА. Хоменко Т.М., Волчо К.П., Захаренко А.Л., Жукова С.В., Анарбаев Р.О., Лаврик О.И., Салахутдинов Н.Ф. 2016 г. № 2581060.
  6. СПОСОБ ДЕТЕКЦИИ Ku-АНТИГЕНА В ЭКСТРАКТАХ КЛЕТОК ЧЕЛОВЕКА. Ильина Е.С., Лаврик О.И., Ходырева С.Н. 2010 г. № 2384623.
  7. СРЕДСТВО ДЛЯ ИНГИБИРОВАНИЯ ФЕРМЕНТА ПОЛИ(АДФ-РИБОЗО)ПОЛИМЕРАЗЫ-1 ЧЕЛОВЕКА. Захаренко А.Л., Соколов Д.Н., Лузина О.А., Суханова М.В., Ходырева С.Н., Захарова О.Д., Салахутдинов Н.Ф., Лаврик О.И. 2013 г. № 2500675.
  8. СПОСОБ ОЦЕНКИ АКТИВНОСТИ СИСТЕМЫ ЭКСЦИЗИОННОЙ РЕПАРАЦИИ НУКЛЕОТИДОВ МЛЕКОПИТАЮЩИХ. Евдокимов А.Н., Петрусева И.О., Цидулко А.Е., Королева Л.С., Серпокрылова И.Ю., Сильников В.Н., Лаврик О.И. 2013 г. № 2492242.



Оборудование


  • Лаборатория располагает уникальной биохимической базой для исследования процессов репликации, эксцизионной репарации оснований и нуклеотидов ДНК человека.
  • Лаборатория использует в работе методы аффинной модификации белков в качестве основного инструмента современной протеомики, что позволяет в сочетании с методами спектроскопии МАЛДИ идентифицировать в клеточных и ядерных экстрактах новые белковые факторы систем репарации ДНК.






© Copyright 2020. ИХБФМ СО РАН

Яндекс.Метрика