Лаборатория химии РНК

Воробьева Мария Александровна

с.н.с., к.х.н.

телефон: (383) 363-51-29, Email

• Разработка подходов к химическому синтезу аналогов и производных олигорибонуклеотидов – искусственных регуляторов экспрессии генов, биосенсоров и инструментов исследований НК-НК и НК-белковых взаимодействий:

Малые интерферирующие РНК (siРНК) и их модифицированные аналоги с улучшенными физико-химическими, биологическими и фармакологическими характеристиками;
Устойчивые в биологических средах модифицированные РНК-аптамеры как перспективные терапевтические и диагностические средства;
Антисенс- и антиген- реагенты и зонды на основе 2'-О-модифицированных олигорибонуклеотидов;
Технологии автоматического mid-scale синтеза олигорибонуклеотидов, их аналогов и конъюгатов.

• Создание мультифункциональных конструкций на основе олигонуклеотидов и синтетических органических и неорганических наноносителей как перспективных инструментов тераностики и биосенсорных наноплатформ.

• Разработаны твердофазные методы синтеза олигорибонуклеотидов и их 2’-O-модифицированных аналогов в качестве базовых структур для создания ген-направленных биологически активных конструкций.

Оптимизированы условия и разработаны протоколы синтеза олигорибонуклеотидов и их аналогов на автоматическом синтезаторе ASM 800 и планшетных синтезаторах ASM 1000 и ASM 2000 (БИОССЕТ, Россия), что позволяет обеспечивать научно-исследовательские работы ЛХРНК и других лабораторий Института.

• Создан широкий спектр новых конъюгатов олигорибонуклеотидов и их 2’-О-метилированных аналогов, несущих в различных положениях олигомерной цепи алкилирующие, фотоактивируемые, триплексформирующие, интеркалирующие, гидрофобные, флуоресцентные и др. группировки, для направленного воздействия на биополимеры. Часть работ этого цикла была удостоена Государственной премии Российской Федерации (1999 г.). Разработан новый подход к функционализации гетероциклических оснований олигорибонуклеотидов, позволяющий конструировать различные типы конъюгатов для изучения РНК-НК и РНК-белковых взаимодействий [Репкова М.Н. и др., Биоорган. химия. 1999. 25. 690; Изв. АН. Сер. хим. 2002. 51, 1104; Nucl., Nucl., Nucleic Acids. 2003. 22, 1509; 2004. 23, 969]. Созданы серии новых фотоактивируемых аналогов мРНК, успешно используемых в качестве инструментов исследования мРНК-связывающего центра рибосом человека (см. страницу Лаборатории структуры и функций рибосом ИХБФМ СО РАН). Созданы устойчивые в биологических средах новые триплексформирующие олиго(2'-О-метилрибонуклеотиды), содержащие на 5’-конце лиганды малой бороздки и триплекс-специфический интеркалятор. Продемонстрирована их способность ингибировать транскрипцию в системе in vitro [Novopashina D.S. et al., Chem. Biodiv. 2005. 2, 936; Halby L. et al., J. Biomol. Struct. Dyn. 2007. 25, 61; Новопашина Д.С. и др., Биоорган. химия. 2013. 39, 159]. Впервые получены 5'-, 3'- и 2'- моно- и биспиренильные конъюгаты олиго(2’-О-метилрибонуклеотидов) и мультипиренильные тандемные конструкции на их основе – перспективные флуоресцентные зонды для изучения гибридизации олигонуклеотидов с НК, выявления мутаций различных типов в ДНК и детекции РНК в растворе. [Novopashina D.S. et al., Nucl., Nucl., Nucleic Acids. 2005. 24, 729; 2007. 26, 821; Крашенинина О.А. и др., Биоорган. химия. 2011. 37, 273; Новопашина Д.С. и др., Вестник НГУ. Серия: Биология, клиническая медицина. 2011. 9, 15].
• Предложен и реализован новый подход к конструированию устойчивых в биологических средах бинарных НК-энзимов на основе рибозима «головка молотка» и ДНКзима 10-23. Показано, что бинарные конструкции способны эффективно расщеплять как короткие РНК-субстраты, так и протяженные природные РНК (на примере MDR1 мРНК и IGF1 мРНК). [Vorobjeva M. et al., Oligonucleotides. 2006. 16, 239; Воробьева М.А. и др., Успехи химии. 2011. 80, 139]. Нуклеазоустойчивые 2'-О-метилрибонуклеозидсодержащие ДНКзимы эффективно ингибируют функции гена IGF-1 в клетках [Fokina A.A. et al., Biochemistry. 2012. 51, 2181]. * Разработаны подходы к синтезу модифицированных siРНК и их конъюгатов, обладающих комплексом улучшенных физико-химических и биологических характеристик [Volkov A.A. et al., Oligonucleotides. 2009. 19, 191; Круглова Н.С. и др., Молекуляр. биология. 2010. 44, 284; Petrova (Kruglova) N.S. et al., Oligonucleotides. 2010. 20, 297; Nucleic Asids Res. 2012. 40, 2330; Durfort T. et al. PLoS ONE. 2012. 7, e29213].
• Разрабатываются подходы к получению мультифункциональных углеродных нанотрубок как платформы для создания биосовместимых транспортеров НК, биосенсоров и инструментов тераностики [Апарцин Е.К. и др., Вестник НГУ. Серия: Биология, клиническая медицина. 2012. 10, 181; Российские нанотехнологии. 2012, 7,38; Novopashina D.S. et al. Ukr. J. Phys. 2012, 57, 718]. Создан макет электрохимического биосенсора для детекции специфических последовательностей НК (совместно с ИНХ СО РАН). [Федоровская Е.О. и др., Заявка на патент РФ № 2011143078 от 26.10.2011].
• Впервые получены 2’-фтор-модифицированные РНК-аптамеры, способные узнавать патогенные аутоантитела из крови больных рассеянным склерозом [Tivanova A.S. et al., Coll. Symp. Ser. Chemistry of Nucleic Acid Components. 2011. 12, 419; Tivanova A.S. et al., FEBS Journal. 2011, 278, 164] и с рецептором инсулиноподобного фактора роста человека I типа (IGF-IR) на поверхности живых клеток [Давыдова А.С. и др., Acta Naturae. 2011, 3, 31; Davydova A. et al., Coll. Symp. Ser. Chemistry of Nucleic Acid Components. 2011, 12, 416], исследованы их свойства.

Базовый проект

• ПФНИ ГАН (2013-2020), VI.62.1.4, 0309-2016-0004 «Интеллектуальные материалы для биомедицины».(2017-2020 гг.)
  

Гранты Российского научного фонда

• № 19-74-20127 инфр «Новые таргетные агенты для БНЗТ глиобластом на основе борсодержащих конъюгатов опухолеспецифичных НК-аптамеров» (2019-2022 гг.)
• № 19-14-00251 «Малые интерферирующие РНК против хронического воспаления и опухолевой прогрессии». (2019-2021 гг.)

Гранты Российского фонда фундаментальных исследований

• № 18-33-20109 мол_а_вед «Стабильность» «Стимул-чувствительные мягкие биоматериалы на основе дендримеров для доставки лекарств.»(2018-2020 гг.)
  
• № 20-54-15005 НЦНИ_а «Новые подходы к адресной доставке в клетки молекул РНК, влияющих на экспрессию митохондриального генома» (2020-2023 гг.)
• № 19-34-51026 «Система доставки компонентов системы геномного редактирования CRISPR/Cas9 в клетки для решения задач современной биомедицины» (2019-2021 гг.)
• № 19-04-00838 А «Фоторегулируемые аналоги РНК для контролируемого воздействия на геном и экспрессию генов».(2019-2021 гг.)
• № 19-04-01073 А «Контролируемая эволюция направляющей РНК – новый подход к повышению эффективности системы геномного редактирования CRISPR/Cas9» (2019-2021 гг.)
• № 22-24-00930 «Поиск новых вариантов sgРНК для улучшения кинетических характеристик системы геномного редактирования CRISPR/Cas9»
• № 22-15-20050 «Новые тест-системы на основе аптамеров для диагностики и мониторинга анкилозирующего спондилита»
• № 22-14-00294 «Системы геномного редактирования CRISPR/Cas9 c регуляцией активности на уровне направляющей РНК.»

1. Exploring combined spin-labeling approach for structural studies of mRNA in the human ribosome. Kolokolov M., Malygin A.A., Graifer D.M., Meschaninova M.I., Vorobyeva M.A., Fedin M.V., Babaylova E.S., Bagryanskaya E.G. J. Chem. Phys. 2025. V. 162. N.11. P. 115103. DOI: 10.1063/5.0245722
2. Novel DNA Aptamers to Dickkopf-1 Protein and Their Application in Colorimetric Sandwich Assays for Target Detection in Patients with Axial Spondyloarthritis. Shatunova E.A., Rychkova A.S., Meschaninova M.I., Kabilov M.R., Tupikin A.E., Kurochkina Y.D., Korolev M.A., Vorobyeva M.A. Int. J. Mol. Sci. 2024. V. 25. P. 12214. DOI: 10.3390/ijms252212214
3. Фоторасщепляемые направляющие РНК для фоторегулируемой системы CRISPR/Cas9. Ахметова Е.А., Вохтанцев И.П., Мещанинова М.И., Воробьева М.А., Жарков Д.О., Новопашина Д.С. Биоорганическая химия. 2024. Т. 50. № 4. С. 556–567. DOI: 10.31857/S0132342324040107
4. Kinetic Features of Degradation of R-Loops by RNase H1 from Escherichia coli. Kuznetsova A.A., Kosarev Y.A., Timofeyeva N.A., Novopashina D.S., Kuznetsov N.A. Int. J. Mol. Sci. 2024. V. 25. N 22. P. 12263. DOI: 10.3390/ijms252212263
5. Extracellular vesicle mimetics as delivery vehicles for oligonucleotide-based therapeutics and plasmid DNA. Oshchepkova A.L., Chernikov I.V., Miroshnichenko S.K., Patutina O.A., Markov O.V., Savin I.A., Meschaninova M.I., Zhukov S., Kupryushkin M.S., Maslov M.A., Sen'kova A.V., Vlassov V.V., Chernolovskaya E.L., Zenkova M.A. Front. bioengin. and Biotech. 2024. V. 12. P. 1-18. DOI: 10.3389/fbioe.2024.1437817
6. Effect of modification of siRNA molecules delivered with aminopropylsilanol nanoparticles on suppression of A/H5N1 virus in cell culture. Repkova M.N., Mazurkov O.Yu., Filippova E.I., Procenko M.A., Mazurkova N.A., Meschaninova M.I., Levina A.S., Zarytova V.F. Biochim. Biophys. Acta - General Subjects. 2024. V. 1868. N 12. P. 130727. DOI: 10.1016/j.bbagen.2024.130727
7. Aptasensors Based on Non-Enzymatic Peroxidase Mimics: Current Progress and Challenges. Davydova A.S., Vorobyeva M.A. Biosensors. 2024. V. 14. N 1. P. 1. DOI: 10.3390/bios14010001
8. Cholesterol Conjugates of Small Interfering RNA: Linkers and Patterns of Modification. Chernikov I.V., Ponomareva U.A., Meschaninova M.I., Bachkova I.K., Vlassov V.V., Zenkova M.A., Chernolovskaya E.L. Molecules. 2024. V. 29. N 4. P. 786. DOI: 10.3390/molecules29040786
9. The Impact of SNP-Induced Amino Acid Substitutions L19P and G66R in the dRP-Lyase Domain of Human DNA Polymerase β on Enzyme Activities. Kladova O.A., Tyugashev T.E., Yakimov D.V., Mikushina E.S., Novopashina D.S., Kuznetsov N.A., Kuznetsova A.A. Int. J. Mol. Sci. 2024. V. 25. N 8. P. 4182. DOI: 10.3390/ijms25084182
10. Cholesterol-Modified Anti-Il6 siRNA Reduces the Severity of Acute Lung Injury in Mice. Chernikov I.V., Bachkova I.K., Sen'kova A.V., Meschaninova M.I., Savin I.A., Vlassov V.V., Zenkova M.A., Chernolovskaya E.L. Cells. 2024. V. 13. P. 767. DOI: 10.3390/cells13090767
11. SNP-Associated Substitutions of Amino Acid Residues in the dNTP Selection Subdomain Decrease Polβ Polymerase Activity. Kladova O.A., Tyugashev T.E., Miroshnikov A.A., Novopashina D.S., Kuznetsov N.A., Kuznetsova A.A. Biomolecules. 2024. V. 14. N 5. P. 547. DOI: 10.3390/biom14050547
12. Фоторегулируемые на уровне направляющей РНК системы CRISPR/CAS. Саковина Л.В., Горленко Е.С., Новопашина Д.С. Биофизика. 2024. Т. 69. № 3. С. 421-431. 10.31857/S0006302924030012
13. Photocleavable Guide RNA for Photocontrolled CRISPR/Cas9 System. Akhmetova E.A., Vokhtantsev I.P., Meschaninova M.I., Vorobyeva M.A., Zharkov D.O., Novopashina D.S. Биоорганическая химия. 2024. V. 50. N 4. P. 1314–1324. DOI: 10.1134/S1068162024040046 перевод
14. LPS-Induced Acute Lung Injury: Analysis of the Development and Suppression by the TNF-α-Targeting Aptamer. Sen'kova A.V., Savin I.A., Chernolovskaya E.L., Davydova A.S., Meschaninova M.I., Bishani А., Vorobyeva M.A., Zenkova M.A. Acta Naturae. 2024. V. 16. № 2 (61). P. 61-71. DOI: 10.32607/actanaturae.27393 перевод
15. The Impact of Chemical Modifications on the Interferon-Inducing and Antiproliferative Activity of Short Double-Stranded Immunostimulating RNA. Bishani А., Meschaninova M.I., Zenkova M.A., Chernolovskaya E.L. Molecules. 2024. V. 29. N 13. P. 3225. DOI: 10.3390/molecules29133225
16. An Approach to the Synthesis of Cyclic Photocleavable RNA for Photoactivatable CRISPR/Cas9 System. Ivanskaya E.V., Meschaninova M.I., Vorobyeva M.A., Zharkov D.O., Novopashina D.S. Russ. J. Bioorganic Chem. 2024. V. 50. N 5. P. 1807–1821. DOI: 10.1134/S1068162024050327 перевод
17. Подход к получению циклических фоторасщепляемых РНК для фотоактивируемой системы CRISPR/Cas9. Иванская Е.В., Мещанинова М.И., Воробьева М.А., Жарков Д.О., Новопашина Д.С. Биоорганическая химия. 2024. Т. 50. № 5. С. 619–632. DOI: 10.31857/S0132342324050051
18. Photocleavable Guide crRNAs for a Light-Controllable CRISPR/Cas9 System. Sakovina L.V., Vokhtantsev I.P., Akhmetova E.A., Vorobyeva M.A., Vorobyev P.E., Zharkov D.O., Novopashina D.S. Int. J. Mol. Sci. 2024. V. 25. N 22. P. 12392. DOI: 10.3390/ijms252212392
19. Role of R-Loop Structure in Efficacy of RNA Elongation Synthesis by RNA Polymerase from Escherichia coli. Timofeyeva N.A., Tsoi E.I., Novopashina D.S., Kuznetsova A.A., Kuznetsov N.A. Int. J. Mol. Sci. 2024. V. 25. N 22. P. 12190. DOI: 10.3390/ijms252212190
20. Липополисахарид-индуцированное острое повреждение легких: анализ особенностей развития и возможность подавления аптамером к TNF-α. Сенькова А.В., Савин И.А., Черноловская Е.Л., Давыдова А.С., Мещанинова М.И., Бишани М.И., Воробьева М.А., Зенкова М.А. Acta Naturae. 2024. Т. 16. № 2. С. 61. DOI: 10.32607/actanaturae.27393
21. Design of Aptamer Sandwich Pairs for Colorimetric Detection of TNFa, Interleukin-17A and Dickkopf-1 Proteins Associated with Ankylosing Spondylitis. Shatunova E.A., Davydova A.S., Danilin N.A., Golyshkin A.A., Korolev M.A., Vorobyeva M.A. J. Sib. Fed. Univ. Math. Phys. 2024. V. 17. N 6. P. 791-797.
22. CRISPR/Cas System Photocontrolled at the Guide RNA Leve. Sakovina L.V., Gorlenko E.S., Novopashina D.S. Биофизика. 2024. V. 69. N 3. P. 349–358. DOI: 10.1134/S000635092470043X перевод
23. Адаптация протокола автоматического твердофазного фосфитамидного синтеза олигодезоксирибонуклеотидов для получения их N-незамещенных амидофосфатных аналогов (P-NH2). Малова Е.А., Пышная И.А., Мещанинова М.И., Пышный Д.В. Биоорганическая химия. 2024. № 6. С. 788-804. DOI: 10.31857/S0132342324060065
24. Adaptation of the Protocol of the Automated Solid-Phase Phosphoramidite Synthesis of Oligodeoxyribonucleotides for Preparing Their N-Unsubstituted Phosphoramidate Analogs (P–NH2). Malova E.A., Pyshnaya I.A., Meschaninova M.I., Pyshnyi D.V. Russ. J. Bioorganic Chem. 2024. V. 50. P. 2455–2472. DOI: 10.1134/S106816202406027X перевод
25. Концепция природной реконструкции генома. Часть 2. Влияние фрагментов экстраклеточной двуцепочечной ДНК на гемопоэтические стволовые клетки. Рузанова В.С., Ошихмина С.Г., Проскурина А.С., Риттер Г.С., Кирикович С.С., Левитес Е.В., Ефремов Я.Р., Карамышева Т.В., Мещанинова М.И., Мамаев А.Л., Таранов О.С., Богачев А.С., Сидоров С.В., Никонов С.Д., Леплина О.Ю., Останин А.А., Черных Е.Р., Колчанов Н.А., Долгова Е.В., Богачев С.С. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2024. Т. 28. № 8. С. 993-1007. DOI: 10.18699/vjgb-24-106
26. Aptamers for Addressed Boron Delivery in BNCT: Effect of Boron Cluster Attachment Site on Functional Activity. Novopashina D.S., Dymova M.A., Davydova A.S., Meschaninova M.I., Malysheva D.O., Kuligina E.V., Richter V.A., Kolesnikov V.A., Taskaev S.Y., Vorobyeva M.A. Int. J. Mol. Sci. 2023. V. 24. P. 306. DOI: 10.3390/ijms24010306
27. Effects of Cationic Dendrimers and Their Complexes with microRNAs on Immunocompetent Cells. Knauer N.Yu., Pashkina E., Aktanova А., Boeva O., Arkhipova V., Barkovskaya M., Meschaninova M.I., Karpus A., Majoral J.-P., Kozlov V., Apartsin E.K. Pharmaceutics. 2023. V. 15. N 1. P. 148. DOI: 10.3390/pharmaceutics15010148
28. Impact of Double-Stranded RNA Internalization on Hematopoietic Progenitors and Krebs-2 Cells and Mechanism. Ritter G.S., Proskurina A.S., Meschaninova M.I., Potter E.A., Petrova D.D., Ruzanova V.S., Kirikovich S.S., Levites E.V., Efremov Y.R., Nikolin V.P., Popova N.A., Venyaminova A.G., Taranov O.S., Ostanin A.A., Chernykh E.R., Kolchanov N.A., Bogachev S.S. Int. J. Mol. Sci. 2023. V. 24. N 5. P. 4858. DOI: 10.3390/ijms24054858
29. Convenient Solid-Phase Attachment of Small-Molecule Ligands to Oligonucleotides via a Biodegradable Acid-Labile P-N-Bond. Kropachava N.O., Golyshkin A.A., Vorobyeva M.A., Meschaninova M.I. Molecules. 2023. V. 28. N 4. P. 1904. DOI: 10.3390/molecules28041904
30. Human Polβ Natural Polymorphic Variants G118V and R149I Affects Substate Binding and Catalysis. Kladova O.A., Tyugashev T.E., Mikushina E.S., Soloviev N.O., Kuznetsov N.A., Novopashina D.S., Kuznetsova A.A. Int. J. Mol. Sci. 2023. V. 24. N 6. P. 5892. DOI: 10.3390/ijms24065892
31. The Activity of Natural Polymorphic Variants of Human DNA Polymerase β Having an Amino Acid Substitution in the Transferase Domain. Kladova O.A., Tyugashev T.E., Mikushina E.S., Kuznetsov N.A., Novopashina D.S., Kuznetsova A.A. Cells. 2023. V. 12. N 9. P. 1300. DOI: 10.3390/cells12091300
32. The Interleukine-17 Cytokine Family: Role in Development and Progression of Spondyloarthritis, Current and Potential Therapeutic Inhibitors. Davydova A.S., Kurochkina Yu.D., Goncharova V., Vorobyeva M.A., Korolev M. Biomedicines. 2023. V. 11. N 5. P. 1328. DOI: 10.3390/biomedicines11051328
33. Подавление EGFR ингибирует сферообразование клеток культуры MCF7 со сверхэкспрессией EGFR. Новак Д.Д., Троицкая О.С., Нуштаева А.А., Жильникова М.В., Рихтер В.А., Мещанинова М.И., Коваль О.А. Acta Naturae. 2023. Т. 15. № 2 (57). С. 60-69. DOI: 10.32607/actanaturae.17857
34. EGFR Suppression Inhibits the Sphere Formation of MCF7 Cells Overexpressing EGFR. Novak D.D., Troitskaya O.S., Nushtaeva A.A., Zhilnikova M., Richter V.A., Meschaninova M.I., Koval O.A. Acta Naturae. 2023. V. 15. N 2 (57). P. 59-69. DOI: 10.32607/actanaturae.17857 перевод
35. 19F electron nuclear double resonance (ENDOR) spectroscopy for distance measurements using trityl spin labels in DNA duplexes. Asanbaeva N.B., Novopashina D.S., Rogozhnikova O.Yu., Tormyshev V.M., Kehl A., Sukhanov A., Shernyukov A.V., Genaev A., Lomzov A.A., Bennati M., Meyerde A., Bagryanskaya E.G. Phys. Chem. Chem. Phys. 2023. V. 25. P. 23454–23466. DOI: 10.1039/d3cp02969g
36. Inner Amino Acid Contacts Are Key Factors of Multistage Structural Rearrangements of DNA and Affect Substrate Specificity of Apurinic/Apyrimidinic Endonuclease APE1. Bulygin A.A., Syryamina V.N., Kuznetsova A.A., Novopashina D.S., Dzuba S.A., Kuznetsov N.A. Int. J. Mol. Sci. 2023. V. 24. N 14. P. DOI: 11474. 10.3390/ijms241411474
37. Cholesterol-conjugated supramolecular multimeric siRNAs: effect of isRNA length on accumulation and silencing in vitro and in vivo. Chernikov I.V., Ponomareva U.A., Meschaninova M.I., Bachkova I.K., Teterina A.A., Gladkikh D.V., Savin I.A., Vlassov V.V., Zenkova M.A., Chernolovskaya E.L. Nucleic Acid Ther. 2023. V. 33. N 6. P. 361-373. DOI: 10.1089/nat.2023.0051
38. Effects of Dendrimer-microRNA Nanoformulations against Glioblastoma Stem Cells. Knauer N.Yu., Meschaninova M.I., Muhammad S., Hänggi D., Majoral J.-P., Kahlert U.D., Kozlov V.A., Apartsin E. Pharmaceutics. 2023. V. 15. N.3. P. 968. DOI: 10.3390/pharmaceutics15030968
39. Efficacy of cell penetration by boron-containing aptamers - novel potential boron delivery agents for boron neutron capture therapy. Novopashina D.S., Dymova M.A., Davydova A.S., Meschaninova M.I., Malysheva D.O., Kuligina E.V., Richter V.A., Kolesnikov Y.A., Taskaev S.Y., Vorobyeva M.A. Biophysical Reviews. 2023. V. 15. P. 1845-1846. DOI: 10.1007/s12551-023-01150-w тезисы конференции
40. 98P Cationic dendrimers as prospective vehicles of therapeutic nucleic acids into tumor cells: Approaches, advantages and challenges. Knauer N., Pashkina E., Boeva O., Aktanova А., Arkhipova V., Meschaninova M.I., Majoral J.-P., Nickel A.-C., Muhammad S., Hänggi D., Kahlert U.D., Kozlov V., Apartsin E. ESMO Open. 2023. V. 8. N 1. Supplement 2. 10.1016/j.esmoop.2023.100956. тезисы конференции

1. РНК-АПТАМЕР, ОБЛАДАЮЩИЙ СПОСОБНОСТЬЮ УЗНАВАТЬ АУТОАНТИТЕЛА, ХАРАКТЕРНЫЕ ДЛЯ РАССЕЯННОГО СКЛЕРОЗА. Тимошенко В.В., Воробьева М.А., Невинский Г.А., Веньяминова А.Г. 2017 № 2644229
2. РНК-АПТАМЕР, ОБЛАДАЮЩИЙ СПОСОБНОСТЬЮ УЗНАВАТЬ ХАРАКТЕРНЫЕ ДЛЯ РАССЕЯННОГО СКЛЕРОЗА АУТОАНТИТЕЛА. Фокина А.А., Воробьева М.А., Тимошенко В.В., Поповецкая А.С., Невинский Г.А., Веньяминова А.Г. 2015 № 2549704.
   
3. СПОСОБ ДЕТЕКЦИИ СПЕЦИФИЧЕСКИХ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЕЙ НУКЛЕИНОВЫХ КИСЛОТ (ВАРИАНТЫ) И УСТРОЙСТВО ДЛЯ ЕГО ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ. Федоровская Е.О., Апарцин Е.К., Новопашина Д.С., Булушева Л.Г., Веньяминова А.Г., Окотруб А.В. 2014 № 2509157.

• Автоматические ДНК/РНК-синтезаторы фирмы БИОССЕТ;
• аналитические и препаративные хроматографы;
• концентратор Speed Vac и ротационные испарители;
• электрофоретическое оборудование;
• термостаты и термомиксеры.