Лаборатория биохимии нуклеиновых кислот [Институт химической биологии и фундаментальной медицины]
ИХБФМ СО РАН » ru » Структура института » Лаборатории » Лаборатория биохимии нуклеиновых кислот
Лаборатория биохимии нуклеиновых кислот

Лаборатория биохимии нуклеиновых кислот

Заведующая лабораторией



Зенкова Марина Аркадьевна
профессор, доктор биологических наук,
лауреат премии Ленинского комсомола
телефон: (383) 363-51-60



Сотрудники

ФИО Должность Звание Телефон E-mail Researcher ID
1. Зенкова Марина Аркадьевна зав. лабораторией д.б.н. 363-51-60 G-5088-2013
2. Власов Валентин Викторович г.н.с. акад. 363-51-60 F-4720-2013
3. Черноловская Елена Леонидовна г.н.с. д.б.н. 363-51-61 G-4678-2013
4. Гончарова Елена Павловна с.н.с. к.б.н. 363-51-62 G-5099-2013
5. Миронова Надежда Львовна в.н.с. к.б.н. 363-51-61 G-1408-2013
6. Кабилова Татьяна Олеговна с.н.с. к.б.н. 363-51-61 G-3494-2013
7. Логашенко Евгения Борисовна с.н.с. к.б.н. 363-51-61 G-1417-2013
8. Патутина Ольга Александровна н.с. к.б.н. 363-51-61 F-9159-2013
9. Бреннер Евгений Владиславович м.н.с. к.б.н. 363-51-61 G-1694-2013
10.Сенькова Александра Васильевна м.н.с. к.м.н. 363-51-61 G-1632-2013
11.Гладких Даниил Викторович м.н.с. 363-51-61
12.Марков Андрей Владимирович м.н.с.к.б.н. 363-51-61 G-3552-2013
13.Марков Олег Владимирович м.н.с. к.б.н. 363-51-61 G-2676-2013
14.Владимирова Альбина Васильевна вед. инженер 363-51-61
15.Дзюба Тамара Николаевна ст. лаборант 363-51-62
16.Иванова Галина Анатольевна ст. лаборант 363-51-62
17.Слуева Татьяна Всеволодовна ст. лаборант 363-51-61
18.Гвоздева Ольга Викторовна ст. лаборант к.б.н. 363-51-61
19.Староселец Ярослав Юрьевич ст. лаборант 363-51-61
20.Черников Иван Вячеславович ст. лаборант 363-51-62
21.Мирошниченко Светлана Константиновна ст.лаборант 363-51-62
22.Жоров Михаил Игоревич ст. лаборант 363-51-62
23.Алексеева Людмила Александровна лаборант 363-51-62
24.Можная Александра Григорьевна зав.виварием

Основные направления исследований


  • Разработка новых методов регуляции экспрессии генов и терапевтических средств на основе олигонуклеотидов и их аналогов
  • Изучение путей доставки генетического материала в клетку
  • Создание и изучение агентов, обладающих нуклеазной активностью для терапевтических целей.

Важнейшие научные результаты


  • Установлен механизм гибридизации антисмысловых олигонуклеотидов с РНК, показано, что этот процесс является многостадийным и инициируется путем формирования промежуточного комплекса между олигонуклеотидом и частично комплементарной ему последовательностью, расположенной в петле или одноцепочечном участке РНК. [Serikov R. et al., J. Biomol. Strt. Dyn., 2011. 29(1), 27].
  • Сконструирована первая в мире «химическая» рибонуклеаза, олигонуклеотид–пептид, расщепляющая РНК после остатков гуанозина. Разработанный катализатор представляет интерес как инструмент исследования структуры РНК и комплексов РНК-белок. [Mironova N.L. et al., Nucleic Acids Res. 2007. 35, 2356; Mironova N.L. et al., J. Biomol. Strt. Dyn. 2006. 23, 591].
  • Впервые показана возможность образования новых молекул РНК в сопряженной реакции расщепления/лигирования, протекающей в комплексе частично-комплементарных олигорибонуклеотидов в присутствии ионов магния. Описанная реакция могла протекать в пребиотических условиях мира РНК, обеспечивая как удлинение молекул, так и появление новых последовательностей. [Nechaev S.V. et al., Int. J. Molecular Sci. 2009. 10, 1788; Lutay A.V. et al., In book: Origin of life. Chemical Approach. 2008, 323; Lutay, A.V. et al., Chem. & Biodivers. 2007. 4, 762; Lutay A.V. et al., Biogeosciences. 2006. 3, 243].
  • Сконструированы и исследованы низкомолекулярные оригинальные соединения, расщепляющие РНК со специфичностью, соответствующей рибонуклеазе А. Показано, что созданные «искусственные рибонуклеазы» обладают противовирусной активностью в отношении РНК-содержащих вирусов и могут быть применены для получения кандидатных вакцин. [Тамкович Н.В. и др., Биоорган. химия. 2010. 36, 223; Kovalev N. et al., Bioorganic Chem. 2008 36, 33; Kovalev N. et al., Bioorg. Chem. 2006. 34, 274].
  • На основе данных о деградации малых интерферируюших РНК (siРНК) и их модифицированных аналогов в среде с сывороткой разработан алгоритм адресной химической модификации siРНК, позволяющий получать siРНК, обладающие повышенной нуклеазоустойчивостью. Эти siРНК вызывают рекордное по длительности подавление экспрессии гена-мишени - в течение 12-14 дней после однократного введения в клетки. [Chernolovskaya E.L. et al., Curr. Opin. Mol. Ther. 2010. 12, 158; Круглова Н.С. и др., Молекуляр. биология. 2010. 44, 284; Спирин П.В. и др., Молекуляр. биология. 2010. 44, 876].
  • Получены малые интерферирующие РНК (siРНК), направленные на мРНК генов c-myc и N-myc, которые эффективно снижают уровень этих мРНК в клетках нейробластомы человека, и в 10-15 раз замедляют скорость роста этих клеток. Подавление экспрессии гена c-myc наблюдается в течение достаточно продолжительного времени, что демонстрирует потенциал малых интерферирующих РНК (siРНК-I) как основы для создания препаратов противораковой терапии. [Акимов И.А. и др., Молекуляр. биология. 2010. 44, 98; Akimov I.A. et al., Oligonucleotides. 2009. 19, 31; Kabilova T.O. et al., Oligonucleotides. 2006. 16, 15; Кабилова Т.О. и др., Молекуляр. биология. 2006. 40, 1037; Kabilova Т.О. et al., Ann. N.Y. Acad. Sci. 2006. 1091, 425].
  • На примере моделей метастазирующих опухолей (карциноме лёгких Льюис и гепатоме А-1) впервые показано, что внутримышечное введение РНКазы А в дозах 0.5–50 мкг/кг, в сочетании с ДНКазой I приводит к практически полному подавлению процесса метастазирования. Снижение количества и площади метастазов коррелирует со снижением уровня циркулирующих внеклеточных РНК и ДНК, а также с повышением уровня рибо-/декзоксирибонуклеазной активности плазмы крови. [Патутина О.А. и др., Acta Naturae. 2010. 2, 95; Патутина О.А. и др., Acta Naturae. 2009. 2, 47; Шкляева (Патутина) О.А. и др., Докл. АН. 2008. 420, 134; Mironova N. et al., Ann. N.Y. Acad. Sci. 2006. 1091, 490].

Текущие гранты


Базовые проекты
Программа фундаментальных научных исследований государственных академий наук (2015 - 2018 гг.)

  • Тема № 62.1.4.Нуклеиновые кислоты как молекулярные мишени, диагностические маркеры и терапевтические препараты. (0309-2014-0008)

Программы фундаментальных исследований РАН по приоритетным направлениям, определяемым РАН

  • Проект ФИМТ 153 МикроРНК и некодирующие РНК плазмы крови как диагностические и прогностические маркеры опухолевого процесса при остеосаркоме (0309-2014-0043).
  • Проект 1.1.4. Получение нанокомплексов для адресной доставки иммуномодулирующей РНК в клетки-мишени (0309-2015-0002)
  • Проект 1.7.1. Биохимия внеклеточных нуклеиновых кислот и новые ген-направленные биологически активные вещества (0309-2015-0005) рук. Власов В.В.

Гранты Российского научного фонда

  • № 16-15-10105 «Исследование молекулярных механизмов интерферон-индуцирующего, антипролиферативного, противоопухолевого и антиметастатического действия оригинальной иммуностимулирующей дцРНК» (2016-2018 гг.)
  • № 17-74-10144 «Активация противоопухолевого цитотоксического Т- клеточного иммунного ответа путем паракринной регуляции с помощью внеклеточных везикул, секретируемых дендритными клетками» (2017-2019 гг.)
  • № 17-75-20120 «Механизмы противовоспалительного и противоопухолевого действия полусинтетических производных глицирретовой кислоты, содержащих цианоеноновый фрагмент в кольце А» (2017-2020 гг.)

Гранты Российского фонда фундаментальных исследований

  • № 17-04-00999 Механизм активации противоопухолевого иммунного ответа под действием дендритных клеток, трансфецированных in vivo с помощью селективно адресованных маннозилированных липосом в комплексе с опухолевой РНК». (2017 - 2019 гг.)
  • № 17-04-01100 «Исследование интернализации siРНК и их модифицированных аналогов нормальными и лейкозными клетками крови человека» (2017 - 2019 гг.)

Стипендии Президента РФ молодым ученым и аспирантам

  • СП-1958.2015.4 «Антисмысловые олигонуклеотиды и их аналоги, обладающие противовирусной активностью в отношении вируса гриппа А». (2015-2017 г.)
  • СП-4766.2016.4 «Разработка противоопухолевых вакцин на основе дендритных клеток человека для предотвращения рецидива опухоли».(2016-2018 г.)

Публикации 2015 - 2017 года


  1. Vasilyeva S.V., Kuznetsov N.A., Kuznetsova A.S., Khalyavina J.G., Tropina D.A., Lavrikova T.I., Kargina O.I., Gornostaev L.M. DNA fluorescent labeling with naphtho[1,2,3-cd]indol-6(2H)-one for investigation of protein-DNA interactions. Bioorg. Chem. 2017. V. 72. P. 268-272.
  2. Vasilyeva S.V., Shtil A.A., Petrova A.S., Balakhnin S.M., Achigecheva P.Y., Stetsenko D.A., Silnikov V.N. Conjugates of phosphorylated zalcitabine and lamivudine with SiO2 nanoparticles: synthesis by CuAAC click chemistry and preliminary assessment of anti-HIV and antiproliferative activity. Bioorg. Med. Chem. 2017. V. 25. N 5. P. 1696-1702.
  3. Repkova M.N., Levina A.S., Chelobanov B.P., Ismagilov Z., Shatskaya N., Baiborodin S.I., Filippova E., Mazurkova N.A., Zarytova V.F. Efficient inhibition of influenza A virus reproduction by unprotected deoxyribozymes delivered into cells in nanocomposite. Int J Antimicrob Agents. 2017. V. 49. N 6. P. 703-708.
  4. Kuznetsov N.A., Lebedeva N.A., Kuznetsova A.A., Rechkunova N.I., Dyrkheeva N.S., Kupryushkin M.S., Stetsenko D.A., Pyshnyi D.V., Fedorova O.S., Lavrik O.I Pre-steady state kinetics of DNA inding and abasic site hydrolysis by tyrosyl-DNA phosphodiesterase 1. J. Biomol. Struct. Dyn. 2017. V. 11. P. 2314-2327.
  5. Ryabchikova E.I., Chelobanov B.P., Parkhomenko R.G., Korchagina K.V., Basova T.V. Degradation of core-shell Au@SiO2 nanoparticles in biological media. Microporous and Mesoporous. Microporous Mesoporous Mater. 2017. V. 248. N 1. P. 46-53.
  6. Shinkai Y., Kashihara S., Minematsu G., Fujii H., Naemura M., Kotake Y., Morita Y., Ohnuki K., Fokina A.A., Stetsenko D.A., Filichev VV., Fujii M. Silencing of BCR/ABL Chimeric Gene in Human Chronic Myelogenous Leukemia Cell Line K562 by siRNA-Nuclear Export Signal Peptide Conjugates Nucleic Acid Ther. 2017. V. 27. N 3. P. 168-175.
  7. Chernonosova V.S., Kvon R.I., Stepanova A.O., Larichev Y.I., Karpenko A.A., Chelobanov B.P., Kiseleva E.V., Laktionov P.P. Human serum albumin in electrospun PCL fibers: structure, release, and exposure on fiber surface. Polym. Adv. Technol. 2017. V. 28. N 7. P. 819-827.
  8. Григорьева А.Е., Дырхеева Н.С., Брызгунова О.Е., Тамкович С.Н., Челобанов Б.П., Рябчикова Е.И. Контаминация препаратов экзосом, выделенных из биологических жидкостей. Биомедицинская химия. 2017. Т. 63. № 1. С. 91-96.
  9. Васильева С.В., Буракова Е.А., Жданова Л.Г., Анисименко М.С., Стеценко Д.А. Флуоресцентное мечение олигонуклеотидных зондов TaqMan с помощью «клик»-химии по реакции катализируемого Cu(I) азид-алкинового циклоприсоединения (CuAAC). Биоорганическая химия. 2017. Т. 43. № 1. С. 51-58.
  10. Прохорова Д.В., Челобанов Б.П., Буракова Е.А., Фокина А.А., Стеценко Д.А. Новые производные олигодезоксирибонуклеотидов, содержащие межнуклеотидную N-тозилфосфорамидную группу: синтез и взаимодействие с комплементарными последовательностями ДНК и РНК. Биоорганическая химия. 2017. Т. 43. № 1. С. 45-50.
  11. Репкова М.Н., Левина А.С., Серяпина Ю.В., Шикина Н.В., Бессуднова Е.В., Зарытова В.Ф., Маркель А.Л. На пути к генотерапии гипертонической болезни: экспериментальное исследование на гипертензивных крысах линии НИСАГ (ISIAN). Биохимия. 2017. Т. 82. № 4. С. 620-625.
  12. Челобанов Б.П., Репкова М.Н., Байбородин С.И., Рябчикова Е.И., Стеценко Д.А. Доставка олигонуклеотидов в ядра клеток с помощью нанокомпозитов на основе наночастиц диоксида титана и полилизина. Молекулярная биология. 2017. Т . 51. № 5. С. 797–808.
  13. Левина А.С., Репкова М.Н., Челобанов Б.П., Бессуднова Е.В., Мазуркова М.А., Стеценко Д.А., Зарытова В.Ф. Влияние способа доставки на противовирусное действие фосфодиэфирных, тиофосфатных и фосфорилгуанидиновых олигонуклеотидов в клетках MDCK, инфицированных вирусом птичьего гриппа H5N1. Молекулярная биология. 2017. Т. 51. № 4. С. 717-723.
  14. Амирханов Р., Зарытова В.Ф., Зенкова М.А. Неорганические наночастицы –транспортёры нуклеиновых кислот в эукариотические клетки. Успехи химии. 2017. Т. 86. № 2. С. 113-127.
  15. Cholesterol-conjugated siRNA accumulates in the different hematopoietic and lymphoid cells. Chernikov I.V., Meshchaninova M.I., Venyaminova A.G., Zenkova M.A., Vlassov V.V., Chernolovskaya E.L. Journal of Hematology and Oncology Research. 2016 V.2 N 2 P. 13 – 19.
  16. Silencing of Inducible Immunoproteasome Subunit Expression by Chemically Modified siRNA and shRNA. Gvozdeva O.V., Prassolov V., Zenkova M.A., Vlassov V.V., Chernolovskaya E.L. Nucleosides Nucleotides Nucleic Acids. 2016 V. 35 N 8. P. 389-403.
  17. Подавление экспрессии гена ДНК-полимеразы аденовирусов человека с помощью модифицированных siРНК. Никитенко Н.А., Speiseder T., Черноловская Е.Л., Зенкова М.А., Dobner T., Прасолов В.С. Молекулярная биология. 2016 Т. 50. № 1 С. 188–192.
  18. Antitumor and antimetastatic effect of small immunostimulatory RNA against B16 melanoma in mice. Kabilova T.O., Sen'kova A.V., Nikolin V.P., Popova N.A., Zenkova M.A., Vlassov V.V., Chernolovskaya E.L. PloS ONE 2016 V. 11 N 3 e0150751.
  19. Modified siRNA effectively silence inducible immunoproteasome subunits in NSO cells. Gvozdeva O.V., Belogurov A.A., Kuzina E.S., Gabibov A.G., Meshchaninova M.I., Venyaminova A.G., Zenkova M.A., Vlassov V.V., Chernolovskaya E.L. Biochimie 2016 V.125. P. 75 – 82.
  20. Oncolytic virus efficiency inhibited growth of tumour cells with multiple drug resistant phenotype in vivo and in vitro. Goncharova E.P., Ruzhenkova J.S., Petrov I.S., Shchelkunov S.N., Zenkova M.A. Journal of Translational Medicine. 2016 V. 14 N 1. P. 241.
  21. Artificial ribonucleases inactivate a wide range of viruses using their ribonuclease, membranolytic, and chaotropic-like activities. Fedorova A.A., Goncharova E.P., Koroleva L.S., Burakova E.A., Ryabchikova E.I., Bichenkova E.V., Silnikov V.N., Vlassov V.V., Zenkova M.A. Antivir Res. 2016 V. 133. P. 73-84.
  22. Молекулярные и клеточные механизмы формирования дендритными клетками противоопухолевого иммунного ответа. Марков О.В., Миронова Н.Л., Власов В.В., Зенкова М.А. Acta Naturae. 2016 Т. 8 № 3 (30) С. 19-33.
  23. Identification of mechanism of semisynthetic derivative of glycyrrhetinic acid Soloxolone methyl on cancer cell. Logashenko E.B., Markov A.V., Kel A.E., Кель-Маргулис О., Zenkova M.A.New Horizons in Translational Medicine. 2016 V. 3 N 2. P. 147.
  24. Systemic delivery of mannosylated liposomes loaded with tumor RNA activates antitumor cytotoxic T-cell response in murine melanoma model. Mironova N.L., Markov O.V., Маслов М.А., Zenkova M.A. New Horizons in Translational Medicine. 2016 V. 3 N 2. P. 145.
  25. Cancer related pathways respond to pancreatic ribonuclease A treatment affecting microRNA machinery of tumour cells. Mironova N.L., Patutina O.A., Brenner E.V., Kurilschikov A.M., Zenkova M.A. New Horizons in Translational Medicine 2016 V. 3 N 2 P. 146 .
  26. Design, synthesis and transfection efficiency of a novel redox-sensitive polycationic amphiphile. Puchkov P.A., Schmendel E.V., Luneva A.S., Morozova N.G., Zenkova M.A., Maslov M.A. Bioorg. Med. Chem. Lett. 2016 V. 26 N 24 P. 5911-5915.
  27. Anti-inflammatory and anticancer activity of semisynthetic derivative of glycyrrhetinic acid Soloxolone methyl. Logashenko E.B., Markov A.V., Zenkova M.A. New Horizons in Translational Medicine. 2016 V. 3 N 2 P. 122.
  28. Design, RNA cleavage and antiviral activity of new artificial ribonucleases derived from mono-, di- and tripeptides connected by linkers of different hydrophobicity. Tamkovich N.V., Koroleva L.S., Kovpak M.P., Goncharova E.P., Silnikov V.N., Vlassov V.V., Zenkova M.A.Bioorg. Med. Chem.2016 V. 24 P. 1346-1355.
  29. A novel expression cassette delivers efficient production of exclusively tetrameric human butyrylcholinesterase with improved pharmacokinetics for protection against organophosphate poisoning.Terekhov S., Smirnov I., Bobik T., Shamborant O., Zenkova M.A., Chernolovskaya E.L., Gladkikh D.V., Murashev A., Dyachenko I., Palikov V., Palikova Y., Кnorre V., Belogurov A., Ponomarenko N., Blackburn G.M., Masson P., Gabibov A.G.Biochimie 2015 V. 118 P. 51-59.
  30. Peptidyl-oligonucleotide conjugates demonstrate efficient cleavage of RNA in a sequence-specific manner.Williams A., Staroseletc Y.Y., Zenkova M.A., Jeannin L., Aojula H., Bichenkova E.V. Bioconjugate Chem. 2015 V. 26 N 6 P. 1129-1143.
  31. 3Synthesis and biological activity of novel deoxycholic acid derivatives.Popadyuk I.I., Markov A.V., Salomatina O.V., Logashenko E.B., Shernyukov A.V., Zenkova M.A., Salakhutdinov N.F.Bioorg. Med. Chem.2015 V. 23 N 15 P. 5022-5034.
  32. 5′-Norcarbocyclic analogues of furano[2,3-d]pyrimidine nucleosides. Matyugina E.S., Logashenko E.B., Zenkova M.A., Kochetkov S.N., Khandazhinskaya A.L.Heterocyclic Communications 2015 V. 21 N 5 P. 259-262.
  33. Structural aspects of non-enzymatic recombination in viral RNA. Watson C., Staroseletc Y.Y., Zenkova M.A., Bryce R., Bichenkova E.V.J. Biomol. Struct. Dyn.2015 V. 33 S. 1 P. 53-54.
  34. Developing a new generation of peptidyl-oligonucleotide conjugates with desired biocatalytic properties against biologically relevant RNA. Williams A., Staroseletc Y.Y., Zenkova M.A., Bichenkova E.V. J. Biomol. Struct. Dyn. 2015 V. 33 S. 1 P. 55-56.
  35. Nonenzymatic recombination of RNA: detection of novel sequences by next-generation sequencing.Staroseletc Y.Y., Brenner E.V., Vlassov V.V., Zenkova M.A.J. Biomol. Struct. Dyn.2015 V. 33 S. 1 P. 52-53.
  36. Multicomponent mannose-containing liposomes efficiently deliver RNA in murine immature dendritic cells and provide productive anti-tumour response in murine melanoma model
  37. Markov O.V., Mironova N.L., Shmendel E.V., Serikov R.N., Morozova N.G., Maslov M.A., Vlassov V.V., Zenkova M.A. J. Control. Release.2015 V. 213 P. 45-56.
  38. Prophylactic Dendritic Cell-Based Vaccines Efficiently Inhibit Metastases in Murine Metastatic Melanoma. Markov O.V., Mironova N.L., Sennikov S.V., Vlassov V.V., Zenkova M.A.PloS ONE.2015 V. 10 N 9 е0136911.
  39. Novel bivalent spermine-based neutral neogalactolipids for modular gene delivery systems. Ivanova E.A., Filatov A.V., Morozova N.G., Zenkova M.A., Maslov M.A. RSC Advances 2015 V. 5 P. 93262-93266.
  40. Анализ комплексных хромосомных нарушений в группе больных острыми лейкозами. Тарновский Р.В., Поспелова Т.И., Зенкова М.А., Таирова С.А. Медицина и образование в Сибири.2015 № 3 C. 55-61.
  41. Small interfering RNAs: delivery, structure, activity. Chernolovskaya E.L., Chernikov I.V., Gvozdeva O.V., Gladkikh D.V., Meshchaninova M.I., Venyaminova A.G., Zenkova M.A., Vlassov V.V. Молекулярная биология. 2015 V. 49 N 5 P. 863-864.
  42. Mechanism of antitumor activity of natural ribonucleases: whole transcriptome analyses and genome wide profieles of miRNAse. Zenkova M.A., Mironova N.L., Patutina O.A., Brenner E.V., Kurilschikov A.M., Vlassov V.V. Молекулярная биология 2015 V. 49 N 5 P. 861-862.


Лекции

  • .Нуклеиновые кислоты.
  • .Механизмы интернализации нуклеиновых кислот эукариотическими клетками.
  • .Что такое терапевтические нуклеиновые кислоты и как они взаимодействуют с клетками.

Патенты


  1. КОМПОЗИЦИЯ ДЛЯ ДОСТАВКИ НУКЛЕИНОВЫХ КИСЛОТ В КЛЕТКИ МЛЕКОПИТАЮЩИХ. Зенкова М.А., Кабилова Т.О., Маслов М.А., Морозова Н.Г., Петухов И.А., Серебренникова Г.А. 2011 № 2423147.
  2. СПОСОБ ОЧИСТКИ ВИРУСА ОСПОВАКЦИНЫ ИЛИ ЕГО РЕКОМБИНАНТНЫХ ВАРИАНТОВ. Гончарова Е.П., Петров И.С., Зенкова М.А. 2014 № 2537000.
  3. РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК pSC13D6, СОДЕРЖАЩАЯ ГЕН ОДНОЦЕПОЧЕЧНОГО АНТИТЕЛА ПРОТИВ ВИРУСА КЛЕЩЕВОГО ЭНЦЕФАЛИТА, И ШТАММ БАКТЕРИЙ Escherichia coli BL21(DE3)/pSC13D6 - ПРОДУЦЕНТ ОДНОЦЕПОЧЕЧНЫХ АНТИТЕЛ ПРОТИВ ВИРУСА КЛЕЩЕВОГО ЭНЦЕФАЛИТА, ОБЛАДАЮЩИХ ВИРУСНЕЙТРАЛИЗУЮЩИМИ СВОЙСТВАМИ. Леванов Л.Н., Тикунова Н.В., Матвеев Л.Э., Гончарова Е.П., Юн Т.Э., Рыжиков А.Б., Матвеева В.А., Рихтер В.А. 2010 № 2378378.
  4. СРЕДСТВО, ОБЛАДАЮЩЕЕ ПРОТИВОВИРУСНОЙ АКТИВНОСТЬЮ. Королева Л.С., Власов В.В., Гончарова Е.П., Зенкова М.А., Ковалев Н.А., Ковпак М.П., Сильников В.Н., Тамкович Н.В. 2010 № 2402563.
  5. СРЕДСТВО, ПРОЯВЛЯЮЩЕЕ ПРОТИВИРУСНУЮ АКТИВНОСТЬ В ОТНОШЕНИИ ДНК- ВИРУСОВ. Федорова А.А., Гончарова Е.П., Буракова Е.А., Сильников В.Н., Власов В.В., Зенкова М.А. 2013 № 2487876.
  6. ПРОТИВООПУХОЛЕВОЕ СРЕДСТВО ТРИТЕРПЕНОВОЙ ПРИРОДЫ, ПОЛУЧЕННОЕ ПУТЕМ МОДИФИКАЦИИ ГЛИЦИРРЕТОВОЙ КИСЛОТЫ. Саломатина О.В., Салахутдинов Н.Ф., Толстиков Г.А., Логашенко Е.Б., Зенкова М.А., Власов В.В. 2010 № 2401273.
  7. ПРОТИВООПУХОЛЕВОЕ СРЕДСТВО ТРИТЕРПЕНОВОЙ ПРИРОДЫ. Саломатина О.В., Салахутдинов Н.Ф., Толстиков Г.А., Логашенко Е.Б., Зенкова М.А., Власов В.В. 2010 № 2393165.
  8. rac-N-[2,3-ДИ(ТЕТРАДЕЦИЛОКСИ)ПРОП-1-ИЛ]ПИРИДИНИЙ БРОМИД В КАЧЕСТВЕ АГЕНТА ДЛЯ ДОСТАВКИ НУКЛЕИНОВЫХ КИСЛОТ В КЛЕТКИ МЛЕКОПИТАЮЩИХ. Маслов М.А., Медведева Д.А., Власов В.В., Зенкова М.А., Морозова Н.Г., Серебренникова Г.А. 2010 № 2405772.
  9. СРЕДСТВО ДЛЯ ИНАКТИВАЦИИ ДНК-ВИРУСОВ. Федорова А.А., Гончарова Е.П., Королева Л.С., Сильников В.Н., Власов В.В., Зенкова М.А. 2013 № 2480478.
  10. ПРОИЗВОДНЫЕ N-ЗАМЕЩЕННОГО 1,4-ДИАЗАБИЦИКЛО-[2.2.2]-ОКТАНА, ПРОЯВЛЯЮЩИЕ ПРОТИВОВИРУСНУЮ АКТИВНОСТЬ В ОТНОШЕНИИ РНК-ВИРУСОВ. Буракова Е.А., Власов В.В., Гончарова Е.П., Зенкова М.А., Ковалев Н.А., Ковпак М.П., Сильников В.Н., Тамкович Н.В. 2010 № 2399669.
  11. ОЛИГОНУКЛЕОТИДПЕПТИДНЫЙ КОНЪЮГАТ, ОБЛАДАЮЩИЙ СПОСОБНОСТЬЮ РАСЩЕПЛЯТЬ ФОСФОДИЭФИРНЫЕ СВЯЗИ РНК В ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЯХ 5'GpN3'. Миронова Н.Л., Пышный Д.В., Штадлер Д.В., Зенкова М.А., Власов В.В. 2007 № 2305108.
  12. СПОСОБ ЛЕЧЕНИЯ ЗЛОКАЧЕСТВЕННЫХ ОПУХОЛЕЙ У ЖИВОТНЫХ. Шкляева О.А., Миронова Н.Л., Зенкова М.А., Власов В.В. 2008 № 2317825.
  13. ФРАГМЕНТЫ ДВУЦЕПОЧЕЧНОЙ РНК, ОБЛАДАЮЩИЕ АНТИПРОЛИФЕРАТИВНОЙ И ИНТЕРФЕРОН-ИНДУЦИРУЮЩЕЙ АКТИВНОСТЯМИ. Кабилова Т.О., Черноловская Е.Л., Зенкова М.А., Власов В.В. 2010 № 2391405.
  14. УГЛЕВОДСОДЕРЖАЩИЕ КАТИОННЫЕ АМФИФИЛЫ, ОБЛАДАЮЩИЕ СПОСОБНОСТЬЮ ДОСТАВЛЯТЬ НУКЛЕИНОВЫЕ КИСЛОТЫ В КЛЕТКИ МЛЕКОПИТАЮЩИХ. Маслов М.А., Медведева Д.А., Власов В.В., Зенкова М.А., Морозова Н.Г., Серебренникова Г.А. 2010 № 2394834.
  15. СРЕДСТВО ДЛЯ ИНАКТИВАЦИИ ВИРУСОВ, ОБЛАДАЮЩЕЕ ОДНОВРЕМЕННОЙ РИБОНУКЛЕАЗНОЙ, МЕМБРАНОЛИТИЧЕСКОЙ И ПРОТИВОВИРУСНОЙ АКТИВНОСТЯМИ. Королева Л.С., Власов В.В., Гончарова Е.П., Зенкова М.А., Ковалев Н.А., Ковпак М.П., Сильников В.Н., Тамкович Н.В. 2010 № 2399388.

Оборудование


Лаборатория располагает уникальным набором современного оборудования:

  • хроматограф Waters Alliance, амплификаторы для проведения PCR в режиме реального времени (Bio-Rad);
  • роботизированная система пробоподготовки (Eppendorf);
  • полный комплект электрофоретического оборудования;
  • флуоресцентные микроскопы, оборудованные ССД-камерами (Zeiss);
  • цитофлюориметр Cytomics FX500 (Beckman Coulter);
  • фосфоримаджер (Bio-Rad);
  • система гель-документации Infinity-1500/36M (Vilber Lormat).




© Copyright 2017. ИХБФМ СО РАН

Яндекс.Метрика